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分離培養細胞的操作步驟
發布時間: 2021-11-12 點擊次數: 3578次材料與儀器活檢組織塊
Ham F12 FBS D-PBSA
手術刀 長剪刀 Petri 培養皿 離心管 血細胞計數板實驗步驟一、材料
無菌
1. 轉運培養液:Ham F12(Seromed 08101),不含 NaHCO3,含有 20 mmol/LHEPES(Serva 25245),75 ml
2. 生長培養液: Ham F12, 添加 20%FBS(Gibco 011-06290),200 ml
3. 鏈霉菌蛋白酶液:0.15% 鏈霉菌蛋白酶(Sigma P-6911)、0.03% EDTA(Merck 8418)、20IU/ml 青霉素和 20ug/ml 鏈霉素(0.4%Eurobio PES300),用 Ham F12 或 D-PBSA 配制 100 ml
4. D-PBSA:100 ml
5. 尼龍網:孔徑為 100um
6. 手術刀
7. 鋒利的長剪刀
8. Petri 培養皿:直徑為 90 mm,用于切組織塊
9. 培養皿:25 cm2,4 個
10. 20 ml 離心管或一般容器,5 只
非滅菌
1. 血細胞計數板
二、操作步驟:
1. 分離:用手術刀切除活檢組織塊上的非肌性組織,然后用 D-PBSA 浸洗。
2. 稱重前,與肌纖維平行將切除活檢組織切成片,用 D-PBSA 沖洗。
3. 將組織片平行放入 Petri 培養皿蓋內,切成較薄的柱狀組織塊,然后切成 1 mm3小塊。不要擠壓組織。也可在試管內用長剪刀將組織簡稱小塊,應避免擠壓組織。
4. 用 D-PBSA 浸洗組織塊,靜置后吸取上清液。
5. 在 37℃ 條件下,用鏈霉菌蛋白酶液消化組織塊 1 h。每 1~3 mg 組織塊用 15 ml 鏈霉菌蛋白酶液。每間隔 10~15 min 輕輕搖晃試管。
6. 孵育后用吸管研磨組織塊。由于越來越多的細胞分離下來,培養液會逐漸變得渾濁。
7. 讓組織塊沉到試管的底部,形成沉降的組織塊(P1)和上清液(S1)。
8. 用孔徑為 100um 的尼龍網將 S1 濾入 20 ml 離心管。輕輕搖晃或用吸管吹打上清液,使細胞混懸。
9. 離心(350 g,8~10 min)后,吸取上清液。
10. 準確加入 10 ml 生長培養液,用帶有橡皮吸頭的吸管很輕微地混懸細胞。然后,用血細胞計數板計數細胞。
11. 用生長培養液稀釋細胞懸液,以約 1.5x104個/ml 的細胞密度將細胞接種于培養瓶。從 1 g 健康供體活檢組織約獲得 1~2x105 個細胞。
12. 將 15 ml 消化液加入 P1,在 37℃ 水浴中孵育組織塊 30 min,并定時搖晃。
13. 用吸管吹打細胞懸液,使細胞分散。然后,用尼龍網過濾細胞懸液。用 20 ml 生長培養液浸洗濾網。
14. 離心(350 g,8~10 min)后,計數細胞,按上述方法接種細胞。
15. 將培養瓶移入濕潤的培養箱,在 37℃ 和 5%CO2 的條件下培養細胞,
安全提示
在扔入垃圾前,應該用次氯酸鹽處理剩余組織和使用過的試管、吸管、培養皿。維持培養
16. 接種后 24 h 很輕微地換培養液,以后每 3~4d 換液 1 次。細胞主要向著分化生長。人成肌細胞的生長分 3 期,培養后 4~6d 增殖達高峰;8d 作用排列成 行;10~12d 細胞融合形成肌管增多。然而,必須記住一些細胞可能分化較早,絕大多數細胞分化時一些細胞仍處于增殖狀態。
傳代培養
17. 將少量 EDTA 輕輕注在細胞上面后立即吸取。
18. 加入 0.25% 胰蛋白酶液,足以在細胞上面形成一薄層。
19. 當細胞去附著時,加入 5~10 ml *生長培養液,用吸管很輕微地吹打細胞,然后離心(350 g,10 min)。
20. 計數細胞,按一定密度種植細胞。